- 产品名称
- 7-氨基放线菌素D
- CAS NO
- 7240-37-1
- 中文别名
- 7-氨基放线菌素D
- 英文名称
- 7-AMINOACTINOMYCIN D
- 英文别名
- 7-AAD;7-AMINODACTINOMYCIN;7-AMINOACTINOMYCIN;7-AMINOACTINOMYCIN C1;7-AMINOACTINOMYCIN D;7-AMINO-AMD;7-ADD;7-ACTINOMYCIN C
- 分子式
- C62H87N13O16
- 分子量
- 1270.43
- EINECS
- 熔点
- 252~253℃
- 沸点
- 1400.8 °C at 760 mmHg
- 毒性

一、基础标识信息
- 中文正式名称:7-氨基放线菌素 D
- 英文全称:7-Aminoactinomycin D
- 通用缩写:7-AAD
- CAS登记号:7240-37-1
- 化学分类:放线菌素类多肽荧光染料、DNA嵌入剂
- 分子式:$\mathrm{C_{61}H_{88}N_{18}O_{16}}$
- 相对分子质量:1362.45
二、理化性质
- 外观形态:固体粉末,呈深红色/紫红色;商品化试剂多为水溶液储存液
- 溶解性:溶于甲醇、DMSO、水;水溶液避光条件下稳定
- pH适配:中性缓冲液(pH 7.2~7.4)染色效果最优,强酸强碱会降低荧光强度
- 稳定性:干粉-20℃避光长期保存;稀释工作液4℃避光可存放1周,不可反复冻融
- 荧光光学特性 (1)最大激发波长:546 nm(绿光激发) (2)最大发射波长:647 nm(远红光) (3)荧光通道适配:流式细胞仪PerCP、PE-Cy5、APC通道,与FITC、PE光谱重叠极小,适合多色组合
三、染色作用机理
- 细胞膜选择性通透特性
- 完整活细胞膜脂质双层屏障完整,7-AAD分子量大、带电荷,无法穿透,活细胞无荧光信号;
- 晚期凋亡、坏死细胞细胞膜破损,染料自由进入胞内。
- DNA结合机制
- 特异性嵌入双链DNA中GC碱基富集区域;
- 与DNA结合后荧光强度显著提升,游离染料荧光微弱,背景极低。
- 染色不可逆:染料结合DNA后无法洗脱,细胞后续无复苏活性,仅用于终点检测。
四、核心实验应用场景
(1)流式细胞术细胞凋亡检测(最主流用途)
- Annexin V-FITC + 7-AAD 双染分群判定标准
- Annexin V? / 7-AAD?:正常活细胞
- Annexin V? / 7-AAD?:早期凋亡细胞(膜外翻,膜完整性未破坏)
- Annexin V? / 7-AAD?:晚期凋亡细胞
- Annexin V? / 7-AAD?:机械损伤、坏死细胞
- 免疫分型去背景 免疫表型检测时加入7-AAD,圈门剔除死细胞,消除死细胞非特异性荧光结合,提高阳性/阴性细胞区分度。
- 微生物死活鉴定:区分细菌、真菌活/死菌体。
(2)免疫荧光组织/细胞切片染色
- 固定石蜡切片、冰冻切片中标记坏死细胞核;
- 搭配DAPI、绿色荧光二抗做多标染色,定位坏死区域。
(3)细胞周期辅助检测(次要用途)
可替代PI进行DNA含量检测,但染色成本更高,常规周期实验优先碘化丙啶PI。
五、7-AAD 对比 PI(碘化丙啶)优势与劣势
优势
- 发射光波长更长,远红光区间,和FITC、PE荧光串扰少,支持4色及以上多色流式方案;
- 游离染料本底荧光低,阴性细胞基线干净,分群边界清晰;
- 短时间孵育对细胞损伤更小,染色操作窗口期宽。
劣势
- 单价高于PI,实验成本更高;
- 分子量更大,通透速度略慢,孵育时间需适当延长;
- 对GC富集DNA结合偏好更强,DNA定量精准度略低于PI。
六、标准实验操作要点(凋亡染色)
- 细胞制备:胰酶消化收集悬浮细胞,预冷PBS洗涤2次,去除血清、碎片杂质;
- 缓冲液配制:使用含Ca²?、Mg²?的Annexin V结合缓冲液,离子是膜磷脂结合必需条件;
- 染色体系:100 μL细胞悬液中加入Annexin V荧光抗体与7-AAD工作液;
- 孵育条件:室温避光5~15 min,避光避免荧光淬灭;
- 上机检测:孵育完成1小时内完成流式采集,染色后放置过久信号衰减。
七、安全操作与毒性说明
- 细胞毒性:放线菌素骨架结构可抑制细胞转录,对活细胞有强毒性,仅用于终点检测;
- 致癌风险:DNA嵌入剂,存在潜在遗传毒性、致癌风险;
- 操作防护
- 全程佩戴一次性手套、口罩,粉末操作在通风橱进行;
- 避免皮肤黏膜接触、吸入粉尘、试剂入口;
- 废液废弃物处理
- 含7-AAD废液单独收集,不可直接倒入下水道;
- 离心管、吸头等耗材按有毒生化废物统一高温灭活后处理。
八、试剂储存与失效判断
- 干粉储存:-20℃、完全避光、干燥密封,有效期2年以上;
- 储备液(水溶液/DMSO):分装避光-20℃保存,避免反复冻融;
- 失效判断标准
- 液体出现沉淀、褪色;
- 阳性对照坏死细胞荧光信号显著下降;
- 阴性细胞出现大面积非特异性荧光背景。
九、实验局限性
- 无法区分早期凋亡细胞,必须联合Annexin V共同检测;
- 仅终点染色,不能用于活细胞动态实时观测;
- 固定通透后的活细胞样本会全部被染色,无法区分死活;
- 高浓度EDTA会破坏细胞膜钙离子环境,抑制Annexin V结合,干扰凋亡分群结果。